PROTOCOLE DE NÉCROPSIE ET DE PRÉLÈVEMENTS À LA FERME
DANS LE CADRE DU PROJET D’EXPERTISE VÉTÉRINAIRE
EN SANTÉ DES BOUVILLONS D’ABATTAGE

Ouverture de la carcasse

A. Examen externe (se référer au feuillet II)

Vérifier l’apparence générale de la carcasse, la condition du poil, la présence de parasites, la couleur et l’apparence des muqueuses, la présence de sécrétions aux orifices et les évidences de blessures, hernies, etc.

B. Examen interne (se référer au feuillet II)

1. Placer le bouvillon sur le côté gauche afin que le rumen soit sous les viscères;

2. Dégager la patte avant en soulevant la patte et en coupant ses attaches musculaires près du thorax; la déposer dorsalement;

3. Désarticuler la patte arrière au niveau coxo-fémoral en la soulevant et en coupant ses attaches musculaires; la déposer dorsalement;

4. Pratiquer une incision sur la ligne médiane au niveau du sternum et la prolonger jusqu’au mandibule cranialement et caudalement jusqu’au pubis OU pratiquer une incision dorsalement, latéralement à la colonne vertébrale et la prolonger jusqu’au cou et à la queue; cette seconde méthode à l’avantage de procurer un plan de surface stérile pour travailler lorsque la peau est rabattue ventralement;

5. Relever la peau, à partir de la ligne de coupe choisie, afin de fournir un espace plus stérile et de faciliter l’approche;

6. Observer le tissu sous-cutané;

7. Ouvrir la cavité abdominale : Inciser caudalement aux dernières côtes et sur la ligne blanche de l’abdomen jusqu’au bord du pelvis - ATTENTION AUX SACS GASTRIQUES;

8. Ouvrir la cavité thoracique : Enlever la cage thoracique en coupant les côtes le long de la ligne centrale jusqu’au cartilage xyphoïde du sternum. Ensuite, couper la première côte le plus dorsalement possible et étendez caudalement à la première vertèbre lombaire. Couper ensuite l’attache au diaphragme et enlever la cage thoracique;

 Astuce : Conserver les côtes car elles pourront vous servir de surface pour déposer les organes thoraciques.

9. Dans les deux cavités (thoracique et abdominale), avant de commencer les prélèvements et l’examen, observer les viscères en place. Noter la position des viscères, la présence d’épanchement, de fibrine…; 

Description des viscères

Dimension de l’organe :  hypertrophié, dilaté, atrophié, 2 fois plus gros que normalement…
Couleur du tissu : rougeâtre, blanchâtre, décoloré…
Texture du tissu : spongieux, affermi, caoutchouteux…
Localisation de la lésion :  cortex rénal, près des bronches…
Forme de la lésion :  punctiforme, arrondie, asymétrique…
Étendue de la lésion : unique, multiple, 2-3 mm de diamètre, tout le lobe pulmonaire cranial, 20 % du rein…
Contenu : sang, fibrine, pus, …

Le praticien doit faire visualiser au pathologiste les lésions qu’il a observées. Par exemple, il mentionnera que la muqueuse et le contenu intestinal sont teintés de sang au lieu de parler d’une « entérite hémorragique ». Trop souvent, la lésion histologique ne permet pas d’arriver au même diagnostic. On observe alors une contradiction entre les rapports d’autopsie du praticien et le rapport d’histopathologie et ce n’est pas souhaitable vis-à-vis la clientèle qui pourrait être amenée à voir ces rapports. Ceci n’empêche pas le praticien d’ajouter un diagnostic provisoire.

10. Toujours commencer l’examen de la cavité thoracique en premier afin d’éviter que la rupture du rumen, de la caillette ou de l’intestin ne vienne contaminer les viscères de la cavité thoracique. Prélever les tissus in situ pour la bactériologie, du moins, puis dégager les viscères pour faciliter l’examen. Évaluer et décrire les anomalies et les lésions. Procéder méthodiquement, la contamination demeure la préoccupation première. Les autres prélèvements peuvent être complétés par la suite; 

CAVITÉ THORACIQUE 

11. Dégager la trachée et l’œsophage au niveau du cou. Pour ce faire, dégager la langue avec deux incisions au niveau du mandibule et effectuer une traction ventrale de la langue jusqu’au pharynx. Couper derrière le palais dur et autour du pharynx au niveau des os hyoïdiens. Désarticuler les os hyoïdiens et continuer à tirer la langue, le pharynx, l’œsophage et la trachée jusqu’au thorax. Inciser ensuite le péricarde pour le dégager de la plèvre et inciser les gros vaisseaux et l’œsophage. Vérifier la présence d’adhérences réductibles / non réductibles (pleurésie chronique). Sortir le système respiratoire au complet : cœur – trachée – œsophage – poumons - langue. Vous pouvez utiliser les côtes comme surface pour déposer les organes;

12. Langue : pratiquer des incisions régulières pour déceler les lésions;

13. Œsophage : ouvrir d’un bout à l’autre; il est recommandé de le laver à l’eau pour mieux observer les érosions et lésions;

14. Larynx et trachée : ouvrir d’un bout à l’autre jusqu’aux bronches;

15. Poumons et ganglions trachéo-bronchiques : examen macroscopique et localisation des lésions;

16. Cœur et gros vaisseaux : inciser le ventricule gauche jusqu’à l’aorte et observer le ventricule, l’oreillette et la valvule aortique; examiner le péricarde, l’endocarde et le myocarde: incisions régulières dans le muscle pour déceler la présence d’abcès; inciser le ventricule droit jusqu’à la veine cave et observer la valvule pulmonaire;

CAVITÉ ABDOMINALE 

Examen des organes en place. Dans la cavité abdominale on prélèvera le foie, le rein et la rate avant d’ouvrir les organes cavitaires.

17. Foie, rein, rate : détacher le foie pour l’examiner en entier et inciser régulièrement le parenchyme et la paroi de la veine cave; examiner la rate et évaluer sa dimension; reins et vessie : dégager les reins et évaluer les uretères (dilatation, hyperhémie). Couper le rein en 4 sections, longitudinales d’abord puis transversalement; déceler la présence de pus; vessie : urine et muqueuse;

18. Réservoirs gastriques : vider les réservoirs un à un et évaluer le contenu, la quantité et la texture; évaluer la paroi du rumen, les papilles; ouvrir la caillette jusqu’au niveau du duodénum car souvent les ulcères se trouvent là;

19. Intestins : évaluer si contenu diarrhéique au côlon et évaluer le reste du petit intestin pour contenu et apparence des muqueuses; évaluer les ganglions mésentériques et iléo-cæcales;

AUTRES TISSUS 

20. Articulations : vérifier plusieurs articulations : jarret, épaule, hanche, atlanto-occipitale. Enlever la peau à la surface pour éviter de contaminer l’exsudat;

21. Muscles : en examiner plusieurs. Pratiquer des incisions régulières. Muscles lombaires, intercostaux et langue;

22. Cerveau : idéalement, il est préférable d’envoyer la tête en entier au laboratoire; sinon, exposer l’articulation atlanto-occipitale et couper la tête. Retirer la peau sur la majorité de la boîte crânienne. À l’aide d’une scie, effectuer deux coupes sagittales, médialement au condyle occipital, du côté gauche et droit; faire une coupe transversale sur l’os frontal, derrière les orbites des yeux; retirer la calotte crânienne pour exposer le cerveau; retirer le cerveau en coupant les nerfs crâniens et les conduits olfactifs.